同位素稀释检测

发布时间:2025-07-03 13:49:05 阅读量:1 作者:生物检测中心

同位素稀释检测:精准定量的核心技术

摘要: 同位素稀释法(Isotope Dilution Mass Spectrometry, IDMS)是现代分析化学中用于绝对定量分析的基石技术,以其极高的准确度、精密度和特异性著称。该方法通过引入已知量的同位素标记物(稀释剂)至样品中,利用质谱仪测量同位素比值的变化,实现对目标分析物的精确定量。本文系统阐述同位素稀释法的基本原理、实验流程、关键影响因素、优势特点及其在多个领域的广泛应用,并展望其未来发展趋势。

一、 基本原理与数学模型

同位素稀释法的核心在于同位素标记的“化学等同性”和“同位素比例变化”:

  1. 化学等同性: 加入的同位素标记物(稀释剂)在化学性质上须与待测目标分析物(分析物)完全相同,仅一个或多个原子被稳定的重同位素(如 ²H, ¹³C, ¹⁵N, ¹⁸O, ³⁴S 等)替代。这确保了稀释剂和分析物在样品前处理(如溶解、萃取、衍生化、色谱分离)过程中的行为高度一致。

  2. 同位素比例变化: 将已知精确质量和同位素丰度的稀释剂(含重同位素)加入到含有未知量分析物(通常含天然丰度同位素)的样品中,两者充分混合并达到同位素交换平衡。

  3. 同位素比值测量: 混合后的样品经适当的前处理和分离(通常采用气相色谱或液相色谱与质谱联用,GC/LC-MS),进入质谱仪检测。质谱仪精确测量混合溶液中代表分析物(含天然丰度)和稀释剂(富集重同位素)特征离子的信号强度比(通常为轻同位素离子与重同位素离子的信号比)。

  4. 定量计算: 测量的同位素比值(R<sub>m</sub>)与以下因素直接相关:

    • 加入的稀释剂中目标分析物的量(N<sub>spike</sub>)
    • 样品中原有目标分析物的量(N<sub>sample</sub>)
    • 稀释剂中重同位素的丰度(A<sub>spike</sub>)
    • 分析物中天然重同位素的丰度(A<sub>nat</sub>)
    • 天然分析物中轻同位素的丰度(B<sub>nat</sub> = 1 - A<sub>nat</sub>)
    • 稀释剂中轻同位素的丰度(B<sub>spike</sub> = 1 - A<sub>spike</sub>)
     

    核心计算公式为:
    N<sub>sample</sub> = N<sub>spike</sub> * [ ( A<sub>spike</sub> - B<sub>spike</sub> * R<sub>m</sub> ) / ( B<sub>nat</sub> * R<sub>m</sub> - A<sub>nat</sub> ) ]
    通过该公式即可计算出样品中目标分析物的绝对量(N<sub>sample</sub>)。浓度可通过除以样品体积或质量得到。

 

二、 实验流程

典型的同位素稀释质谱分析流程包括:

  1. 样品制备: 根据样品基质和分析物性质进行采集、保存、均质化等处理。
  2. 精准加入稀释剂: 在样品处理早期(最好在样品完全溶解或均质后立即加入),使用精密天平或高精度移液器,加入已知且精确量的同位素标记稀释剂溶液。关键点: 加入时机需确保稀释剂与分析物经历完全相同的后续处理过程。
  3. 平衡与混合: 确保稀释剂与分析物充分均匀混合,并达到同位素交换平衡(对于共价键结合的标记,有时需特定条件如加热、酶解)。
  4. 样品前处理: 进行必要的萃取、净化、浓缩、衍生化等步骤,去除干扰基质,富集目标物。
  5. 仪器分析: 采用 GC-MS 或 LC-MS/MS 进行分离和检测。选择特定的特征离子对(母离子/子离子)进行检测,通常一个离子来自天然同位素分子(轻同位素),另一个离子来自标记分子(重同位素)。
  6. 数据采集与处理: 采集目标离子对的色谱峰面积(或峰高)。计算混合样品中被测物的同位素比值(R<sub>m</sub> = 轻离子峰面积 / 重离子峰面积)。
  7. 定量计算: 将测量得到的 R<sub>m</sub> 值、已知的 N<sub>spike</sub>、A<sub>spike</sub>、A<sub>nat</sub>(通常为标准值)代入公式,计算 N<sub>sample</sub>。
  8. 质量控制: 全程伴随空白实验、基质加标回收实验、标准参考物质分析等质控措施。
 

三、 关键影响因素与优势

  • 关键影响因素:
    • 稀释剂的纯度与丰度: 直接影响计算准确性,需精确标定。
    • 稀释剂加入量的准确性: 直接影响 N<sub>spike</sub> 的准确度。
    • 混合均匀性与同位素交换: 必须充分确保。
    • 质谱测量的精密度与准确度: 尤其是同位素比值的测量。
    • 同位素效应: 尽管标记物化学性质相似,重同位素可能引起轻微物理化学性质差异(如色谱保留时间轻微偏移、电离效率微小差异),需评估或在计算中校正。
    • 信号干扰: 基质干扰或其他同质异位素可能影响目标离子对的测量,需通过色谱分离、选择性离子监测或高分辨质谱排除干扰。
    • 样品前处理损失: 理想情况下前处理损失对分析物和稀释剂是成比例且完全相同的,因此损失不会影响最终定量结果(这是IDMS抗基质效应的核心优势)。
  • 核心优势:
    • 高准确度与精密度: 被认为是基准测量方法之一,常用于标准物质定值和仲裁分析。
    • 抗基质效应: 稀释剂与分析物经历相同的样品前处理和仪器分析过程,能有效补偿回收率损失、基质抑制/增强效应等带来的误差。
    • 特异性强: 结合色谱分离和同位素特征离子对检测,选择性高。
    • 适用于复杂基质: 在环境、生物、食品等复杂样品分析中优势显著。
    • 可实现绝对定量: 结果不依赖于外标校准曲线。
 

四、 主要应用领域

同位素稀释质谱法因其卓越的准确性,广泛应用于对定量结果要求严苛的领域:

  1. 临床诊断与生物医学研究:
    • 疾病生物标志物的准确定量(如激素、维生素、代谢物、药物及其代谢物)。
    • 治疗药物监测(TDM),精确测定血液中药物的浓度。
    • 蛋白质组学中的绝对定量(AQUA策略),用于测定蛋白质或特定修饰肽段的绝对含量。
    • 代谢流分析。
  2. 环境监测:
    • 环境样品(水、土壤、沉积物、大气颗粒物)中痕量污染物(持久性有机污染物POPs、内分泌干扰物、重金属形态、纳米颗粒)的精准测定。
    • 污染物迁移转化研究。
  3. 食品安全与营养分析:
    • 食品中农药残留、兽药残留、真菌毒素、非法添加物的痕量检测。
    • 营养素(维生素、矿物质、脂肪酸)的准确含量测定。
    • 食品真伪鉴别与溯源(如稳定同位素比值分析)。
  4. 法医学:
    • 滥用药物及其代谢物的精确定量。
    • 毒物分析。
  5. 材料科学:
    • 高纯材料中痕量杂质的测定。
    • 半导体材料中掺杂剂浓度的标定。
  6. 计量学与标准物质定值:
    • 国家计量机构常用同位素稀释质谱法作为基准方法,为各种标准参考物质(SRM)赋值,建立溯源链。
 

五、 发展趋势

  1. 高通量分析: 结合自动化样品前处理平台和快速扫描质谱技术(如飞行时间质谱TOF-MS),提高IDMS的分析通量。
  2. 多重标记与组学应用: 发展多重同位素标记策略,结合高分辨质谱(HRMS),实现在蛋白质组学、代谢组学等组学研究中同时对数百种目标物进行绝对定量。
  3. 新型标记物开发: 探索更稳定、更易于合成、同位素丰度更高、同位素效应更低的标记分子(如金属元素螯合剂标记)。
  4. 联用技术深化: 与更强大的分离技术(如二维色谱)和更灵敏、分辨率的质谱技术(如Orbitrap、离子淌度质谱)联用,提升复杂基质中痕量目标物的检测能力。
  5. 微型化与现场检测: 开发便携式或小型化质谱仪,探索IDMS在现场快速、准确检测的可能性。
  6. 数据标准化与软件智能化: 开发更智能、自动化的数据处理软件,统一计算标准和报告格式,提高分析效率和结果可比性。
 

六、 总结

同位素稀释质谱法凭借其独特的基于同位素比值变化的定量原理,有效克服了传统分析方法中常见的基质效应和回收率问题,成为当今追求高准确度和高可靠性定量分析的金标准。其在临床、环境、食品、法医、材料以及计量学等众多关键领域的成功应用,证明了其巨大的价值和不可替代性。随着质谱技术、标记化学和数据处理方法的持续进步,同位素稀释法将继续在痕量精准分析的科学前沿发挥核心作用,并为解决日益复杂的分析挑战提供强有力的工具。该方法的深入发展和广泛应用,对于保障人类健康、环境安全、贸易公平和科技进步具有重要意义。

参考文献 (示例格式):

  1. Heumann, K. G. (1992). Isotope dilution mass spectrometry (IDMS) of the elements. Mass Spectrometry Reviews, 11(1), 41–67.
  2. De Bièvre, P., & Peiser, H. S. (1997). Basic equations and uncertainties in isotope-dilution mass spectrometry for traceability to SI of values obtained by this primary method. Fresenius' Journal of Analytical Chemistry, 359(7), 523–525.
  3. Fenn, J. B., et al. (1989). Electrospray ionization for mass spectrometry of large biomolecules. Science, 246(4926), 64-71. (虽然非直接IDMS,但推动了LC-MS发展,使其成为IDMS主流平台)。
  4. Gerber, S. A., et al. (2003). Absolute quantification of proteins and phosphoproteins from cell lysates by tandem MS. Proceedings of the National Academy of Sciences, 100(12), 6940-6945. (描述蛋白质组学的AQUA策略)。
  5. International Vocabulary of Metrology – Basic and General Concepts and Associated Terms (VIM 3rd edition). JCGM 200:2012. (定义了溯源性等计量学概念,IDMS常作为建立溯源链的关键方法)。
  6. Rodríguez-González, P., et al. (2005). Isotope dilution analysis for elemental speciation: A tutorial review. Spectrochimica Acta Part B: Atomic Spectroscopy, 60(2), 151–207.
  7. Santamaria-Fernandez, R., & Hearn, R. (2008). Application of isotope dilution mass spectrometry (IDMS) to the determination of vitamins in food matrices. Journal of Chromatography A, 1190(1-2), 74-85.