土壤碱性磷酸酶(S-AKP/ALP) 活性检测

发布时间：2025-06-28 08:01:39 阅读量：1 作者：生物检测中心

土壤碱性磷酸酶(S-AKP/ALP)活性检测方法详解

一、引言

土壤酶是土壤生态系统物质循环的关键驱动者。碱性磷酸酶（Alkaline Phosphatase, 简称AKP或ALP）在碱性条件下（最适pH通常为9-10）催化有机磷化合物水解，释放出植物可利用的无机磷酸盐。该酶活性是评估土壤磷素转化潜力、微生物活性和土壤肥力状况的重要生物学指标，广泛应用于农业、生态修复和环境监测等领域。

二、检测原理

本方法采用广泛认可的对硝基苯磷酸二钠（p-Nitrophenyl phosphate disodium salt, PNPP）比色法：

  1. 底物水解： 在碱性缓冲液（pH ≈ 10）环境中，土壤样品中的碱性磷酸酶催化底物对硝基苯磷酸二钠（PNPP）水解，生成对硝基苯酚（p-Nitrophenol, PNP）和无机磷酸盐（Pi）。
  
 
 
 
PNPP (无色) + H₂O → PNP (黄色) + Pi
  1. 显色与终止： 反应达到预定时间后，加入强碱溶液（如NaOH）终止酶反应。碱性环境使产物对硝基苯酚（PNP）呈现稳定的黄色。
  2. 定量分析： 在特定波长（通常为400 nm或410 nm）下测定黄色溶液的吸光度（Abs）。吸光度值与生成的PNP量（即酶活性）成正比。
 

三、所需材料与试剂

  • 仪器设备：
    • 恒温振荡培养箱（或恒温水浴摇床）
    • 分光光度计
    • 离心机（配50mL离心管）
    • 恒温干燥箱
    • 分析天平（精度0.0001g）
    • pH计
    • 振荡器（或涡旋混合器）
    • 移液器（不同量程）及枪头
    • 比色皿（光径1 cm）
    • 三角瓶（100 mL, 250 mL）
    • 容量瓶（50 mL, 100 mL, 1000 mL）
    • 离心管（50 mL）
    • 滤纸或漏斗（用于过滤）
    • 试管或比色管
  • 试剂（分析纯及以上）：
    • 对硝基苯磷酸二钠（PNPP, C₆H₄NO₆PNa₂·6H₂O）
    • 三羟甲基氨基甲烷（Tris, (CH₂OH)₃CNH₂）
    • 氯化镁（MgCl₂·6H₂O）
    • 氢氧化钠（NaOH）
    • 氯化钙（CaCl₂）
    • 甲苯（C₇H₈） （用于抑制微生物活动）
    • 对硝基苯酚（PNP, C₆H₅NO₃） （标准品）
    • 超纯水
 

四、溶液配制

  1. pH 10.0 的Tris缓冲液（0.1 M）： 称取12.11 g Tris溶于约800 mL超纯水中，用稀盐酸（约0.1 M HCl）调节pH至10.0 ± 0.1（25°C），定容至1000 mL。4°C保存。
  2. 底物溶液（0.05 M PNPP）： 称取0.189 g PNPP溶于20 mL pH 10.0的Tris缓冲液中。（此溶液需现用现配，或分装后冷冻保存，避免反复冻融）
  3. 氯化镁溶液（0.1 M）： 称取2.033 g MgCl₂·6H₂O溶于100 mL超纯水中。
  4. 甲苯溶液： 直接使用分析纯甲苯。
  5. 终止剂（0.5 M NaOH）： 称取20.0 g NaOH溶于1000 mL超纯水中。（含0.5 M CaCl₂：称取55.5 g CaCl₂溶于1000 mL 0.5 M NaOH中，可选，有助于絮凝土壤颗粒）
  6. 对硝基苯酚（PNP）标准储备液（1 mM）： 精确称取0.1391 g PNP（分子量139.11 g/mol）溶于少量超纯水，转移至1000 mL容量瓶定容。4°C避光保存。
  7. 对硝基苯酚（PNP）标准工作液： 用Tris缓冲液将储备液稀释成一系列浓度梯度（如0, 5, 10, 20, 30, 40, 50 μM PNP）。
 

五、操作步骤

  1. 土样制备：

    • 采集新鲜土壤样品，迅速过2 mm筛，剔除根系、石块等杂物。
    • 测定土壤含水量（取部分样品105°C烘干至恒重）。
    • 关键： 剩余土壤样品需在4°C冰箱中保存，并尽快（通常建议在1周内）完成酶活性测定，以保持酶活性稳定。避免冷冻（可能破坏酶）和长时间常温放置。

  2. 反应体系建立：

    • 称取1.00 g（精确至0.01g）过筛后的新鲜土样于50 mL离心管（或具塞三角瓶）中。
    • 加入0.2 mL甲苯溶液，轻轻摇匀（涡旋混合器数秒），室温放置15-20分钟（抑制微生物活动）。
    • 加入4 mL pH 10.0的Tris缓冲液。
    • 加入1 mL 0.1 M MgCl₂溶液（作为激活剂）。
    • 加入1 mL新鲜配制的0.05 M PNPP底物溶液。此时即为反应起始时刻（t0）。
    • 立即将离心管盖紧（或三角瓶塞紧），置于37°C恒温振荡培养箱（或水浴摇床）中，以120-150 rpm的速度避光振荡培养1小时。（温度和时间是重要参数，需严格控制）

  3. 反应终止与显色：

    • 培养结束后，立即向离心管中加入10 mL冰冷的0.5 M NaOH溶液（或含0.5 M CaCl₂的0.5 M NaOH溶液）终止反应。充分摇匀。
    • 将离心管在4°C条件下，4000 rpm离心10分钟（或室温下静置澄清，或用无磷滤纸过滤）。
    • 小心吸取上清液（避免吸入沉淀）至干净的比色皿中。

  4. 空白对照设置：

    • 基质空白（Soil Blank）： 除在加入底物PNPP溶液之前先加入10 mL 0.5 M NaOH终止液外，其余步骤与样品处理完全相同。此空白用于扣除土壤本身颜色及非酶促水解的干扰。
    • 试剂空白（Reagent Blank）： 不加土壤样品，用等量超纯水代替土壤，其余步骤相同。此空白用于扣除试剂背景颜色。

  5. 吸光度测定：

    • 用分光光度计，在410 nm波长处（或400 nm），以试剂空白调零（或使用超纯水调零后测定试剂空白值），测定样品上清液和基质空白上清液的吸光度值（分别记为A样品和A空白）。

  6. 标准曲线制作（每次测定时需同步进行）：

    • 分别取不同浓度（如0, 5, 10, 20, 30, 40, 50 μM）的PNP标准工作液各1 mL于试管中。
    • 向每管中加入4 mL Tris缓冲液、1 mL MgCl₂溶液和10 mL 0.5 M NaOH溶液（模拟终止后的体系）。
    • 混匀后，在410 nm波长处以0 μM管（或超纯水）调零，测定各浓度管的吸光度（A标准）。
    • 以PNP浓度（μM）为横坐标，吸光度值（A标准）为纵坐标，绘制标准曲线，计算线性回归方程（通常为A = k * [PNP] + b）。
 

六、结果计算

  1. 计算样品中实际产生的PNP量：

    • 根据样品吸光度（A样品）和基质空白吸光度（A空白），计算净吸光度（ΔA）：
      ΔA = A样品 - A空白
    • 利用标准曲线方程（或标准曲线斜率k），计算反应液中PNP的浓度（C_PNP，单位为μM）：
      C_PNP (μM) = (ΔA - b) / k （或直接从曲线上查得）

  2. 计算土壤碱性磷酸酶活性：

    • 酶活性通常表示为：单位时间内，单位质量土壤（干重）催化生成的PNP量。

    • 计算公式：
      酶活性 [μg PNP/(g·h)] = (C_PNP * V_t * MW_PNP * D) / (t * m_d)

    • 式中：

      • C_PNP：反应液中PNP浓度（μM = μmol/L）
      • V_t：反应终止后提取液的总体积（单位：L）。本例中：土壤1g + 缓冲液4mL + MgCl₂ 1mL + 底物1mL + 终止液10mL = 16 mL = 0.016 L。
      • MW_PNP：对硝基苯酚的分子量（139.11 g/mol）。
      • D：单位转换因子（将μg/g转换成μg/g）：10⁶ μg/g / 10⁶ μmol/mol = 1 （因为1 μmol PNP = 139.11 μg PNP）。
      • t：反应培养时间（单位：小时h）。本例为1小时。
      • m_d：参加反应的新鲜土样对应的干土质量（单位：g）。
        m_d = m_fresh * (100% - W%) / 100%
        其中：m_fresh为称取的新鲜土样质量（g），W%为该新鲜土样的含水量（%）。

    • 简化公式： 代入常数值和本例体积参数：
      酶活性 [μg PNP/(g·h)] = (C_PNP * 0.016 * 139.11 * 1) / (1 * m_d)
      = (C_PNP * 2.22576) / m_d

 

七、注意事项

  1. 样品新鲜度： 土壤碱性磷酸酶活性易受保存条件和时间影响。新鲜土样是获得可靠结果的前提，应尽快测定。
  2. 温度控制： 酶反应对温度敏感，恒温培养箱或水浴的温度必须精确维持在设定值（如37±0.5°C）。
  3. 反应时间： 严格控制反应时间，确保在反应线性期内（通常1小时是安全的），避免底物过度消耗或产物抑制。
  4. 土壤代表性： 称样前确保土样混合均匀。土水比（本方法约为1:16）是重要参数，保持一致。
  5. 基质空白： 必须设置基质空白以消除土壤背景干扰，这对颜色较深的土壤尤为重要。
  6. 底物稳定性： PNPP溶液易水解，务必现用现配或妥善冷冻保存。
  7. 终止彻底性： 加入的终止液（NaOH）体积要足够（通常使pH > 12），确保酶反应完全停止。
  8. 离心/过滤： 离心或过滤需彻底，避免土壤颗粒进入比色皿干扰吸光度测定。
  9. 标准曲线： 每次测定必须同步制作标准曲线，以校正仪器波动和试剂差异。
  10. 结果表述： 明确注明反应温度、时间和表示单位（如μg PNP/g dry soil/h）。报告中应包含干土质量计算依据（含水量）。
 

八、应用与意义

测定土壤碱性磷酸酶活性具有多方面价值：

  1. 磷素生物有效性评估： 直接反映土壤中有机磷向植物可利用态无机磷转化的生化潜力，是评价土壤供磷能力的重要生物学指标。
  2. 土壤肥力评价： 常作为评价土壤生物学肥力和健康状态的综合指标之一，高活性通常意味着更活跃的养分循环。
  3. 微生物活性指示： 酶主要来源于土壤微生物，其活性可在一定程度上反映微生物群落的代谢活跃程度。
  4. 环境胁迫响应： 土壤受到重金属、农药、有机污染物污染或pH剧烈变化（如盐碱化）时，碱性磷酸酶活性常表现出敏感变化，可作为环境监测的生物标志物。
  5. 农业管理措施评价： 用于评估施肥（尤其是有机肥、磷肥）、耕作方式、轮作制度、秸秆还田等措施对土壤磷循环及微生物活性的影响。
 

通过标准化的检测流程和严谨的操作，土壤碱性磷酸酶活性的测定可为土壤生态功能研究、环境质量评价和农业可持续管理提供关键的科学依据。