可溶性酸性转化酶(AI)活性检测

发布时间:2025-06-28 08:01:39 阅读量:1 作者:生物检测中心

可溶性酸性转化酶(AI)活性检测方案

一、 引言

可溶性酸性转化酶(Acid Invertase, AI, EC 3.2.1.26)是一种在酸性条件下(最适pH通常在4.5-5.0)催化蔗糖不可逆水解成果糖和葡萄糖的关键酶。广泛存在于植物(如液泡、细胞壁、胞质)、酵母及部分微生物中。AI不仅在植物蔗糖代谢调控、糖分积累(如水果成熟、块茎发育)、响应胁迫(如低温、干旱)等方面扮演重要角色,也是微生物利用蔗糖的关键酶。因此,准确测定AI活性对研究糖代谢生理、植物生长发育、果实品质形成及微生物代谢工程等具有重要意义。

二、 检测原理

本方法基于3,5-二硝基水杨酸(DNS)比色法测定AI催化蔗糖水解产生的还原糖(果糖和葡萄糖)量来反映酶活性。

  1. 酶促反应:
    • AI催化蔗糖水解:蔗糖 + H₂O → 果糖 + 葡萄糖
  2. 还原糖检测 (DNS法):
    • 在碱性加热条件下,还原糖(果糖和葡萄糖)能将无色的3,5-二硝基水杨酸(DNS)试剂中的硝基(-NO₂)还原成氨基(-NH₂)。
    • 该还原反应导致DNS分子结构变化,生成一种在波长540nm左右具有最大光吸收的红棕色氨基化合物(3-氨基-5-硝基水杨酸)。
  3. 定量关系:
    • 生成的有色化合物在540nm处的吸光度值(OD₅₄₀)与反应体系中还原糖的量在一定浓度范围内呈线性正比关系。
    • 通过测量反应液的OD₅₄₀,并与葡萄糖标准曲线比较,即可计算出反应产生的还原糖总量。
  4. 酶活性定义:
    • 通常定义:在特定反应条件(温度、pH)下,单位时间(如每分钟)内,单位质量样品(如每克鲜重组织-FW、每毫克蛋白)催化产生1 μmol还原糖所需的酶量为一个酶活性单位(U)。
    • 常用单位:μmol min⁻¹ gFW⁻¹ 或 μmol min⁻¹ mgProtein⁻¹。
 

三、 实验材料与试剂

  • 样品: 植物组织(叶片、根、果实、种子等,需新鲜或液氮速冻后-80℃保存)、微生物菌体或培养液(离心收集菌体)。
  • 主要试剂 (均为分析纯):
    • 提取缓冲液 (100 mM pH 4.6 醋酸钠缓冲液): 称取8.203g三水合醋酸钠溶于约900mL水中,用冰醋酸调节pH至4.6,定容至1000mL。4℃保存。
    • 反应底物 (200 mM 蔗糖溶液): 称取6.846g蔗糖溶于100mL提取缓冲液中。临用前配制或分装-20℃保存。
    • 0.1 M NaOH溶液: 称取4.000g氢氧化钠溶于1000mL水中。
    • DNS试剂:
      • 称取3,5-二硝基水杨酸 (DNS) 3.15g,溶于约500mL热水中(可磁力搅拌加热助溶)。
      • 缓慢加入100mL 2M NaOH溶液(称取80g NaOH溶于1000mL水)。
      • 加入91.0g酒石酸钾钠。
      • 加入2.5g苯酚(或2.5mL液态苯酚)。苯酚可增强显色稳定性。
      • 加入2.5g无水亚硫酸钠。
      • 待所有组分溶解后,冷却至室温,用水定容至1000mL。
      • 储存于棕色瓶,室温避光保存。使用前需放置一周使其稳定,有效期为6个月。
    • 葡萄糖标准溶液(10 mM): 精确称取180.16mg无水葡萄糖(预先于105℃烘至恒重),溶于水中,定容至100mL。此为贮备液。临用前用提取缓冲液稀释成0.5、1、2、3、4、5 mM系列标准溶液。
  • 主要仪器设备:
    • 低温离心机
    • 分光光度计
    • 恒温水浴锅
    • 移液器及相应枪头
    • 玻璃匀浆器或研钵与杵(预冷)
    • 离心管(1.5mL, 15mL)
    • 试管(具塞)或比色皿
    • 冰盒
    • pH计
    • 分析天平
 

四、 实验步骤

注: 所有操作在冰上进行(除非特别说明),以保护酶活性。

  1. 样品前处理 (酶液提取):

    • 植物组织:
      • 称取新鲜样品(如0.5-1.0g)于预冷的研钵中,加入少量液氮快速研磨成细粉。
      • 加入预冷的提取缓冲液(如5mL/g FW),冰浴中继续研磨成匀浆。
      • 将匀浆液转移至预冷的离心管中,4℃条件下,10000-15000g离心20分钟。
      • 小心吸取上清液(即为粗酶提取液),置于冰上备用(此为可溶性组分)。
    • 微生物菌体:
      • 收集菌体,用预冷的提取缓冲液洗涤1-2次。
      • 按一定比例(如1:5 w/v)悬浮于预冷的提取缓冲液中。
      • 使用超声破碎仪冰浴破碎细胞(功率、时间根据菌种优化,避免过热),或使用玻璃珠匀浆器破碎。
      • 4℃条件下,12000-15000g离心20分钟。
      • 吸取上清液(粗酶提取液),置于冰上备用。
  2. 酶活性测定反应:

    • 准备两组反应管:测定管对照管 (用于扣除样品中原本存在的还原糖)。
    • 测定管 (每个样品设重复):
      • 取一支试管,加入0.5mL粗酶提取液。
      • 加入0.5mL预热至37℃(或设定的最适反应温度,如30℃)的200mM蔗糖底物溶液(用提取缓冲液配制)。
      • 轻轻混匀,立即放入37℃(或设定温度)恒温水浴中,准确计时反应30分钟。
    • 对照管 (每个样品设重复):
      • 取一支试管,加入0.5mL粗酶提取液。
      • 先加入0.5mL 0.1M NaOH溶液 终止酶活性,混匀。
      • 再加入0.5mL 200mM蔗糖底物溶液。
      • 同样放入37℃(或设定温度)水浴中保温30分钟(此时酶已失活,仅作为背景对照)。
 
 
 
 
* **空白管 (仅测定显色背景):** * 取一支试管,加入0.5mL提取缓冲液(代替酶液)。 * 加入0.5mL 200mM蔗糖底物溶液。 * 加入0.5mL 0.1M NaOH溶液终止反应(此步在反应后立即加入)。 * 放入37℃水浴保温30分钟。
 
 
 
* **终止反应:** 反应30分钟后,向**测定管**和**对照管**中各加入**0.5mL 0.1M NaOH溶液**,立即混匀以终止酶反应。

3. 显色反应与比色测定:
* 从上述所有反应管(测定管、对照管、空白管)及葡萄糖标准管(见下步)中各吸取1.0mL反应终止液。
* 分别加入到新的具塞试管中。
* 向每管中加入1.0mL DNS试剂。
* 充分混匀。
* 将试管置于沸水浴中准确加热5分钟(显色反应)。
* 立即取出试管,用冷水快速冷却至室温。
* 向每管中加入4.0mL蒸馏水(或根据比色皿体积调整,使最终体积适合比色),充分混匀。
* 用分光光度计在波长540nm处,以空白管调零,分别测定测定管(OD测)对照管(OD对)葡萄糖标准管溶液的吸光度值(OD₅₄₀)。

  1. 葡萄糖标准曲线绘制:
    • 取一系列浓度(如0, 0.5, 1, 2, 3, 4, 5 mM)的葡萄糖标准溶液各0.5mL,分别置于试管中。
    • 向每管中加入0.5mL 0.1M NaOH溶液(模拟终止反应后状态)。
    • 再向每管中加入0.5mL 200mM蔗糖底物溶液(模拟反应体系状态)。相当于每个标准管含有0-5mM葡萄糖(来自标准液)和100mM蔗糖(来自底物)。
    • 按上述步骤3进行显色和比色(显色时吸取1mL,加1mL DNS,沸水浴5min,冷却,加水定容,测OD₅₄₀)。
    • 以葡萄糖浓度(mM)为横坐标(X),对应的OD₅₄₀值为纵坐标(Y),绘制标准曲线。标准曲线应具有良好的线性关系(R² > 0.99)。获得线性回归方程:Y = aX + b (其中a为斜率,b为截距)。
 

五、 数据处理与计算

  1. 计算反应产生的还原糖量:

    • 根据测定的OD值(OD测 和 OD对)和标准曲线回归方程,分别计算:
      • 测定管中还原糖浓度 C测 (mM) = (OD测 - b) / a
      • 对照管中还原糖浓度 C对 (mM) = (OD对 - b) / a
    • 酶反应实际产生的还原糖浓度 ΔC (mM) = C测 - C对
    • 注意: 此浓度 ΔC 是反应终止液(总体积1.5mL = 0.5mL酶液+0.5mL蔗糖+0.5mL NaOH)中还原糖的浓度。
  2. 计算还原糖生成量:

    • 反应终止液总体积 V终 = 1.5 mL
    • 反应实际产生的还原糖量 Amount (μmol) = ΔC (mM) * V终 (mL) = ΔC * 1.5
      • 解释:1 mM = 1 μmol/mL,所以 ΔC (mM) * V终 (mL) = (μmol/mL) * mL = μmol
  3. 计算酶活性:

    • 酶促反应时间 t (min) = 30 min
    • 参与反应的酶液体积 V酶 (mL) = 0.5 mL
    • 单位体积酶液活性 (U/mL) = Amount (μmol) / (t (min) * V酶 (mL)) = Amount / (30 * 0.5) = Amount / 15
    • 进一步换算到样品单位:
      • 以鲜重(FW)计:
        • 样品鲜重 W (g)
        • 提取时加入的提取缓冲液总体积 V提 (mL)
        • 酶活性 (U/g FW) = [单位体积酶液活性 (U/mL) * V提 (mL)] / W (g)
      • 以蛋白含量计 (更精确):
        • 需先用合适方法(如Bradford法)测定粗酶提取液的蛋白质浓度 C蛋白 (mg/mL)。
        • 酶活性 (U/mg Protein) = 单位体积酶液活性 (U/mL) / C蛋白 (mg/mL)
 

六、 注意事项

  1. 温度控制: 样品提取、离心全程需在低温(0-4℃)进行。酶反应需在恒温水浴中精确控温。
  2. 时间控制: 酶促反应和DNS显色反应的时间必须严格控制一致。
  3. 酶液稀释: 若酶活性过高,导致OD值超出标准曲线线性范围,需用提取缓冲液适当稀释酶液后重新测定,结果乘以稀释倍数。
  4. 背景扣除: 设置对照管(先灭活酶)是准确扣除样品中非酶水解产生或本身含有的还原糖所必需的。
  5. 蔗糖纯度: 确保使用的蔗糖纯度足够高,不含还原糖杂质。可用DNS试剂检测蔗糖溶液本底OD值应接近空白。
  6. DNS试剂: 新配制的DNS试剂需老化一周后使用效果更稳定。储存过程中若有沉淀析出,需重新配制。
  7. 显色稳定性: 显色后的溶液应在数小时内完成比色测定,避免颜色变化(通常1小时内稳定)。
  8. pH准确性: 提取缓冲液和反应体系的pH对AI活性至关重要,务必用pH计精确校准。
  9. 样品代表性: 确保取样均匀,尤其是植物组织不同部位酶活性可能有差异。
 

七、 应用与意义

本检测方案提供了一种相对简便、快速、成本较低且可靠的方法来定量测定多种生物样品(植物、微生物)中的可溶性酸性转化酶(AI)活性。该方法在以下研究中具有广泛应用价值:

  • 植物生理学: 研究果实发育成熟过程中的糖代谢调控、种子萌发、块根/块茎糖分积累机制、植物对生物/非生物胁迫(如低温、干旱、盐碱、病虫害)的糖信号响应。
  • 作物育种与栽培: 筛选高糖分或特定糖分组成(蔗糖/还原糖比例)的作物品种,评估栽培措施(如施肥、灌溉)对果实品质的影响。
  • 食品科学: 评价果蔬采后贮藏过程中糖分转化与品质变化的关系。
  • 微生物学与生物技术: 研究酵母、细菌等微生物利用蔗糖的代谢途径,筛选或改造高效利用蔗糖的工业菌株(如生产乙醇、有机酸、酶制剂等)。
  • 酶学性质研究: 作为基础方法用于测定酶的最适pH、最适温度、动力学参数(Km, Vmax)、抑制剂/激活剂效应等。
 

通过准确测定AI活性,可以深入了解生物体蔗糖代谢的关键调控节点,为相关领域的科学研究、农业生产和工业应用提供重要的生化指标依据。