胃蛋白酶活性检测

发布时间:2025-06-28 08:01:39 阅读量:1 作者:生物检测中心

胃蛋白酶活性检测完整方案

一、 检测原理

胃蛋白酶是一种重要的消化酶,专一性水解蛋白质中芳香族氨基酸(如苯丙氨酸、酪氨酸)的氨基端肽键。本方法采用酪蛋白作为特异性底物。
标准反应条件(37°C, pH 2.0)下,胃蛋白酶作用于酪蛋白,将其水解生成可溶性的酪氨酸等含酚基氨基酸。
反应产物与
Folin-酚试剂
反应,生成蓝色复合物。该复合物在660 nm波长处具有最大吸收峰,其光密度值与酶解产生的酪氨酸量成正比,进而反映胃蛋白酶的催化活性。

二、 所需试剂与材料

  • 底物溶液 (1.0% 酪蛋白溶液):
    • 精确称取10.00 g酪蛋白(酶活性测定级)。
    • 溶于适量预热至37°C的0.1 mol/L盐酸缓冲液(pH 2.0)中。
    • 于37°C水浴中搅拌助溶,完全溶解后,用同一缓冲液定容至1000 mL。
    • 置于37°C水浴中保温备用(现配现用)。
  • 0.1 mol/L 盐酸缓冲液 (pH 2.0):
    • A液 (0.2 mol/L KCl): 称取14.91 g KCl溶于水,定容至1000 mL。
    • B液 (0.2 mol/L HCl): 吸取17.04 mL浓盐酸(约36-38%),加水稀释至1000 mL。
    • 工作缓冲液: 量取25.0 mL A液 + 67.0 mL B液,加水稀释至200 mL。使用精密pH计校准并确保pH值严格为2.00 ± 0.02(37°C)。必要时用少量A液或B液微调。
  • Folin-酚试剂:
    • 按照标准方法配制或使用市售合格产品(确保不含企业信息)。
  • 0.4 mol/L 碳酸钠溶液:
    • 称取42.40 g无水碳酸钠,溶于约800 mL水中,溶解后定容至1000 mL,混匀。
  • 三氯乙酸溶液 (TCA, 0.4 mol/L):
    • 称取65.40 g三氯乙酸,溶于水,定容至1000 mL。
  • 酪氨酸标准储备液 (1.0 mg/mL):
    • 精确称取105℃干燥至恒重的L-酪氨酸100.0 mg。
    • 溶于少量0.1 mol/L盐酸溶液中(约70-80 mL),完全溶解后,用同一盐酸溶液定容至100 mL。4℃避光储存。
  • 酪氨酸标准工作液 (100 μg/mL):
    • 准确吸取10.0 mL酪氨酸标准储备液,用0.1 mol/L盐酸溶液定容至100 mL。现配现用。
  • 酶稀释液:
    • 即0.1 mol/L盐酸缓冲液(pH 2.0)。
  • 待测酶样品溶液:
    • 准确称取或吸取适量样品,用预冷的酶稀释液进行适当稀释,使其活性在后续测试范围内(通常需预实验确定稀释倍数)。稀释液需置于冰浴中。
  • 仪器与设备:
    • 恒温水浴锅(精度±0.1°C)
    • 分光光度计
    • 计时器
    • 移液器(不同量程)
    • 试管(具塞或普通)
    • 离心机(若能快速离心)
    • 容量瓶、烧杯等玻璃器皿
    • 精密pH计(带温度补偿)
 

三、 操作步骤

  1. 标准曲线的制备:

    1. 取6支洁净干燥试管,按下表加入试剂:

      试管号 酪氨酸标准工作液 (100 μg/mL) (mL) 酶稀释液 (mL) 相当于酪氨酸量 (μg)
      S0 (空白) 0.0 1.0 0
      S1 0.2 0.8 20
      S2 0.4 0.6 40
      S3 0.6 0.4 60
      S4 0.8 0.2 80
      S5 1.0 0.0 100
    2. 向每支试管中依次加入:

      • 预热至37°C的1.0%酪蛋白溶液 2.0 mL
      • 0.4 mol/L TCA溶液 3.0 mL (立即加入以终止假想反应)。
    3. 充分混匀,静置10分钟。若有浑浊或沉淀,可于4000 rpm离心10分钟,或静置足够时间待其澄清(约30分钟)。

    4. 小心吸取上清液 1.0 mL 至另一组洁净干燥试管中(避免吸入沉淀)。

    5. 向这些试管中依次加入:

      • 0.4 mol/L 碳酸钠溶液 5.0 mL
      • Folin-酚试剂 1.0 mL (需快速加入并立即混匀)。
    6. 充分混匀,于室温(25±5°C)下避光放置60分钟显色。

    7. 用分光光度计,以S0管调零(或空气空白),在660 nm波长处测定各管(S1-S5)的光密度值(OD660)。

    8. 以酪氨酸含量(μg)为横坐标(X),对应的OD660值为纵坐标(Y),绘制标准曲线(或进行线性回归,得到直线方程 Y = aX + b,计算相关系数r应 ≥ 0.999)。

  2. 样品酶活性测定:

    1. 取2支洁净干燥试管,标记为样品管(U)空白管(B)
    2. 样品管(U):
      • 加入预热至37°C的1.0%酪蛋白溶液 2.0 mL。
      • 置于37°C水浴中精确平衡5分钟。
      • 准确加入预热的待测酶样品溶液 1.0 mL (确保酶液温度也为37°C),立即开启计时器。
      • 混匀,精确反应10分钟
      • 立即加入预冷的0.4 mol/L TCA溶液 3.0 mL,终止反应。充分混匀。
    3. 空白管(B):
      • 加入预热至37°C的1.0%酪蛋白溶液 2.0 mL。
      • 置于37°C水浴中精确平衡5分钟。
      • 先加入预冷的0.4 mol/L TCA溶液 3.0 mL。
      • 然后加入预热的待测酶样品溶液 1.0 mL。注意:此步骤顺序是关键,确保酶反应在终止剂加入后被阻止。充分混匀。
    4. 将U管和B管混匀后,静置10分钟。若有浑浊或沉淀,可于4000 rpm离心10分钟,或静置足够时间待其澄清(约30分钟)。
    5. 小心吸取U管和B管的上清液各 1.0 mL,分别置于另外两支洁净干燥试管中。
    6. 向这两支试管中依次加入:
      • 0.4 mol/L 碳酸钠溶液 5.0 mL
      • Folin-酚试剂 1.0 mL (需快速加入并立即混匀)。
    7. 充分混匀,于室温(25±5°C)下避光放置60分钟显色。
    8. 用分光光度计,以水或试剂空白调零(或用标准曲线S0管调零),在660 nm波长处分别测定样品管(U)和空白管(B)的光密度值 (OD_U, OD_B)。
 

四、 结果计算

  1. 计算反应净光密度值:

    ΔOD = OD_U - OD_B

  2. 根据标准曲线计算酪氨酸生成量:

    • 将ΔOD值代入标准曲线方程 Y = aX + b 中。
    • 解方程求得样品管在10分钟反应时间内生成的酪氨酸量(μg),记为 X_μg
    • :在标准曲线上直接查得ΔOD对应的酪氨酸量 X_μg。
  3. 计算酶活力单位:

    • 定义:在本标准测定条件下(37°C, pH 2.0),每分钟催化酪蛋白水解产生1 μg酪氨酸所需的酶量,定义为 1个胃蛋白酶活力单位 (U)
    • 样品总活力 (单位) = (X_μg * F) / (10 min * V_enzyme)
      • X_μg: 样品管净生成的酪氨酸量 (μg) (来自步骤2)。
      • F: 样品溶液的总稀释倍数 (从原始样品到最终加入到反应管中的酶液)。
      • 10 min: 反应时间 (分钟)。
      • V_enzyme: 加入到反应管中的酶样品溶液体积 (mL),此处为 1.0 mL
    • 简化公式: 样品总活力 (单位) = (X_μg * F) / 10
  4. 结果表示:

    • 固体样品:通常表示为 单位/克 (U/g)单位/毫克 (U/mg)

      活力/mass = 样品总活力 (单位) / 参与最终反应体系的酶液所对应的原始样品质量 (g 或 mg)

    • 液体样品:通常表示为 单位/毫升 (U/mL)

      活力/volume = 样品总活力 (单位) / 参与最终反应体系的酶液所对应的原始样品体积 (mL)

    • 示例: 某固体酶样品稀释了1000倍后,取1 mL(含原始样品1 mg)进行测定,测得X_μg=40 μg。则:

      样品总活力 = (40 μg * 1000) / 10 = 4000 单位
      比活力 = 4000 单位 / 0.001 g = 4, 000, 000 U/g (或 4000 U/mg)

 

五、 关键注意事项

  1. 温度控制: 缓冲液、底物溶液、酶液(除终止前)必须严格预平衡至37°C。水浴温度波动需控制在±0.1°C内。温度偏差是结果变异的主要来源之一。
  2. pH精度: 盐酸缓冲液的pH值必须精确为2.00 ± 0.02 (37°C下测定)。pH计需使用标准缓冲液在测定温度下校准。
  3. 反应时间: 10分钟反应时间必须精确控制。加入酶液启动反应和加入TCA终止反应的动作需快速准确。
  4. 试剂新鲜度: 酪蛋白溶液、Folin-酚试剂建议现配现用。缓冲液、TCA、碳酸钠溶液可短期储存,但需定期检查澄清度与pH。酶稀释液需临用前配制并预冷(活性高的酶易失活)。
  5. 混匀操作: 在加入酶液启动反应、加入TCA终止反应、加入Folin-酚试剂显色时,必须立即彻底混匀,以保证反应均一和充分。
  6. 终止有效性: 空白管(B)的加样顺序(先加TCA后加酶)至关重要,确保该管中无酶促反应发生,用于扣除样品中非酶促产生的显色物质。
  7. 离心/静置: 确保TCA沉淀完全,上清液清晰透明方可吸取。吸取上清时避免吸入沉淀物。
  8. 显色稳定性: Folin-酚显色反应在60分钟时通常达到稳定,之后颜色缓慢加深。所有测定管(标准和样品)的显色时间应保持一致。
  9. 酶液稀释: 待测酶液活性应调整至在标准曲线范围内(通常OD_U在0.2-0.8之间为宜)。过高需稀释,过低需减小稀释倍数或增加酶液加入量(需调整计算)。
  10. 平行操作: 建议样品测定设置双管或三管平行,取平均值计算。
  11. 质量控制: 定期使用已知活力的胃蛋白酶对照品(如药典标准品)进行测定,验证方法的准确度和精密度。
 

六、 应用意义

该检测方法广泛应用于:

  • 消化酶制剂(如含胃蛋白酶的复方消化酶)的活性质量控制。
  • 食品工业中用于肉类嫩化、蛋白水解的胃蛋白酶产品的效价测定。
  • 生物学、医学研究中胃蛋白酶活性的体外评价。
  • 胃药、保健品中胃蛋白酶成分的功效评价。
 

通过标准化的胃蛋白酶活性检测,可确保产品的有效性、批次间一致性,并为科学研究提供可靠数据。

关键计算步骤总结表

步骤 计算公式 说明
1. 净光密度值 (ΔOD) ΔOD = OD_U - OD_B U:样品反应管, B:空白(先终止后加酶管)
2. 酪氨酸生成量 (X_μg) X_μg = (ΔOD - b) / a 或 查标准曲线 a, b为标准曲线斜率、截距 (Y=aX+b, Y=OD, X=μg)
3. 样品总活力 (单位) 总活力 = (X_μg * F) / 10 F: 样品从原始到反应管的总稀释倍数
4. 比活力 (U/g 或 U/mL) U/g = 总活力 / m
U/mL = 总活力 / v
m: 参与反应酶液对应的原始样品质量(g)
v: 参与反应酶液对应的原始样品体积(mL)

本方案力求严谨、详实、可操作性强,并完全避免了任何企业相关信息,符合您的要求。实际应用中,请务必严格遵守操作规程和质量控制要点。