氨水诱导的小鼠咳嗽模型:原理、操作与应用
摘要: 氨水诱导咳嗽模型是一种经典、简便且广泛应用的动物实验模型,主要用于研究咳嗽反射机制、评价镇咳药物的疗效及探索气道高反应性相关疾病病理生理机制。本文详细阐述了该模型的建立方法、评价指标、优缺点及适用范围。
一、 模型原理
氨气(NH₃)是一种水溶性刺激性气体。当小鼠吸入雾化的氨水溶液时,氨气分子迅速溶解于上呼吸道及大气道黏膜表面的粘液中,形成氢氧化铵(NH₄OH),呈现强碱性。这种碱性刺激可直接作用于气道黏膜上的感觉神经末梢(主要是瞬时受体电位香草素亚型1 TRPV1通道和瞬时受体电位锚蛋白亚型1 TRPA1通道),诱发传入神经兴奋性冲动,上传至延髓咳嗽中枢,最终引发咳嗽反射。
二、 模型建立方法
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实验动物:
- 通常选用健康成年小鼠(如昆明种、C57BL/6、BALB/c等)。
- 体重范围:18-25g。
- 饲养环境:标准SPF级动物房,自由摄食饮水,实验前适应性饲养至少3天。
- 伦理要求: 实验方案需经实验动物伦理委员会批准,实验操作遵循动物福利原则,尽量减少动物痛苦。实验结束后实施安乐死。
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主要试剂与仪器:
- 氨水溶液: 分析纯或更高纯度的氨水(浓度通常为25%-35%),用生理盐水稀释至所需浓度(常用浓度范围为:5%-25%,体积比)。
- 雾化装置: 医用压缩气体雾化器(如压缩空气或氧气驱动),喷出雾粒直径宜在1-5μm以利于沉积于呼吸道。
- 动物固定装置: 透明有机玻璃雾化箱(体积适中,约1-5L),确保动物在箱内可自由活动但不易逃脱。
- 计时器: 记录咳嗽潜伏期和咳嗽次数。
- 生理盐水: 作为阴性对照。
- 防护装备(实验者):口罩、手套、护目镜(在通风橱或通风良好环境下操作)。
- (可选)视频/音频记录设备:用于后续行为学分析。
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操作步骤:
- 准备: 小鼠实验前禁食禁水2-4小时(减少口腔分泌物干扰),称重,编号。
- 装置连接: 将雾化器与雾化箱连接密封。
- 对照组: 取一只小鼠放入雾化箱,启动雾化器,喷入生理盐水(或低浓度氨水,如0.5%),持续喷雾一定时间(通常1-5分钟),记录小鼠在喷雾期间及喷雾结束后一段时间内(如5-10分钟)的咳嗽次数和首次咳嗽发生时间(潜伏期)。
- 模型组 / 给药组:
- (若评价药物)给药: 提前给予待测镇咳药(灌胃、腹腔注射、吸入等)或阳性对照药(如可待因)。设立空白对照组(溶剂)和阳性药对照组。
- 诱导咳嗽: 将小鼠放入雾化箱,启动雾化器,喷入设定浓度的氨水溶液(如10%,15%,20%),持续喷雾相同时间(通常1-5分钟)。
- 观察记录: 由训练有素且对分组信息不知情的研究人员,通过直接观察(或结合视频/音频回放)记录:
- 咳嗽潜伏期: 从开始喷氨水到出现第一次咳嗽的时间(秒)。
- 咳嗽次数: 在整个喷雾期间及喷雾结束后设定的观察时间内(如5-10分钟)小鼠发生的咳嗽总次数。小鼠咳嗽的特征性表现为:弓背、张口、头部前伸伴随一次或多次短暂、剧烈的爆发性呼气动作,通常伴有特征性声音。
- 清洗: 每组实验结束后,彻底清洗、干燥雾化箱和连接管道,避免残留氨气干扰后续实验。
- 重复: 每组需有足够数量的动物(通常n≥8-10)以保证统计学效力。
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浓度与时间选择:
- 浓度梯度: 通常通过预实验选择合适的氨水浓度。过低浓度可能无法有效诱导足够咳嗽次数;过高浓度(如>25%)可能引起强烈刺激甚至气道损伤、窒息死亡。常用有效诱导浓度为7.5%-20%。
- 喷雾时间: 通常为1-5分钟。需平衡刺激强度和动物耐受性。观察时间(喷雾后)通常设定为5-10分钟。
三、 评价指标
- 核心指标:
- 咳嗽次数: 最直接反映咳嗽反射强度的指标。模型组咳嗽次数显著高于生理盐水对照组。
- 咳嗽潜伏期: 反映刺激敏感性。模型组潜伏期通常显著短于对照组。
- 辅助指标(可选):
- 刺激期间动物行为变化(如舔鼻子、抓挠面部、躁动不安等)。
- (若研究气道炎症)实验后取支气管肺泡灌洗液(BALF)分析炎症细胞数量与类型、炎性因子水平;取肺组织进行病理学检查(HE染色观察炎症浸润和组织损伤)。
- (若研究神经机制)取迷走神经节或相关脑区进行分子生物学(如qPCR检测咳嗽相关受体表达)或免疫组化分析。
四、 模型优缺点
- 优点:
- 简便易行: 设备要求相对简单,操作便捷,耗时短。
- 高效稳定: 短时间内可诱导出显著的咳嗽反应,模型成功率高。
- 成本低廉: 主要试剂(氨水)价格便宜。
- 应用广泛: 主要用于初筛镇咳药,研究外周感觉神经在咳嗽中的作用。
- 缺点与局限性:
- 刺激性单一: 主要模拟化学刺激性咳嗽,与临床上更为常见的炎症性咳嗽(如感冒、哮喘、COPD)或多因素引起的慢性咳嗽在机制上有差异。
- 气道损伤风险: 高浓度氨水可能造成气道黏膜化学性灼伤,引起炎症反应,干扰对单纯咳嗽反射的评价(进行病理检查时需注意区分)。
- 标准化挑战: 雾化效率、雾粒大小、动物活动状态、观察者主观性等因素可能影响结果稳定性,需严格控制和标准化操作。
- 种属差异: 啮齿类动物与人类的咳嗽反射通路存在一定差异,实验结果外推需谨慎。
五、 应用范围
- 镇咳药物筛选与评价: 是初步评价中枢性和外周性镇咳药效力的经典模型。
- 咳嗽反射机制研究: 研究感觉神经末梢(TRPV1, TRPA1等)在化学刺激性咳嗽中的作用。
- 气道感觉神经高敏感性研究: 探究神经源性炎症、神经可塑性改变在气道高反应性中的作用(常需结合其他模型或检测)。
- (需谨慎解读)气道炎症初步观察: 高浓度刺激后可通过BALF和病理检查观察继发性炎症反应。
六、 注意事项
- 安全防护: 氨水具有挥发性和刺激性,操作务必在通风橱或通风极好的环境下进行,实验人员佩戴好防护装备。
- 动物福利: 密切观察动物状态,避免使用过高浓度氨水导致剧烈痛苦或死亡。实验过程应尽可能缩短。提供必要镇痛措施(通常短时刺激无需额外镇痛,但若需取材需麻醉)。
- 标准化操作: 固定雾化箱体积、雾化器流量、喷雾时间、氨水浓度、动物禁食时间、观察环境和观察人员,以减少实验误差。建议使用视频记录以便复核。
- 设置严格对照: 生理盐水对照组必不可少,以排除雾化操作本身、雾化噪音、环境改变等非特异性因素的影响。
- 结果解释: 认识到该模型主要反映急性化学刺激性咳嗽,其结论应用于临床时应考虑人体咳嗽的复杂性。
结论:
氨水诱导的小鼠咳嗽模型以其简便、高效、经济的特点,成为咳嗽基础和药物研究领域的重要工具。它为阐明咳嗽外周神经机制和筛选潜在镇咳药物提供了有效平台。然而,研究者应充分认识其模拟化学刺激性咳嗽的局限性,合理设计实验(包括浓度和时间的选择),严格遵守动物伦理规范,并结合其他模型和方法,以更全面地理解复杂的咳嗽病理生理过程和药物作用机制。
参考文献: (此处列出关键参考文献,例如)
- Karlsson, J. A., Sant'Ambrogio, G., & Widdicombe, J. (1988). Afferent neural pathways in cough and reflex bronchoconstriction. Journal of Applied Physiology, 65(3), 1007–1013.
- Dicpinigaitis, P. V. (2007). Cough: an unmet clinical need. British Journal of Pharmacology, 150(4), 481–483.
- 王, 长征等. (2009). 豚鼠和小鼠咳嗽模型的研究进展. 国际呼吸杂志, 29(18), 1126-1129. (请替换为更具体的近期研究文献)
- Belvisi, M. G., & Geppetti, P. (2004). Cough. 7: Current and future drugs for the treatment of chronic cough. Thorax, 59(5), 438–440. (讨论药物评价)
注意: 本文提供的是该模型的通用描述和方法框架。具体实验设计中,浓度、时间、观察时长等参数需根据研究目的、动物品系和预实验结果进行优化和确定。