乳杆菌、双歧杆菌、肠球菌检测

发布时间:2025-06-20 11:23:44 阅读量:2 作者:生物检测中心

乳杆菌、双歧杆菌、肠球菌检测:方法与意义详解

肠道菌群作为人体重要的“微生物器官”,其组成与健康息息相关。乳杆菌(Lactobacillus)、双歧杆菌(Bifidobacterium)和肠球菌(Enterococcus)是肠道菌群中的核心成员,它们的丰度与平衡深刻影响着宿主的消化吸收、免疫调节乃至代谢健康。准确检测这三种细菌的数量与活性,对评估肠道微生态状态、研究疾病关联机制及指导干预策略具有关键价值。

一、 为何检测这三种细菌?

  1. 乳杆菌(Lactobacillus):

    • 作用: 发酵糖类产生乳酸等短链脂肪酸,维持肠道酸性环境(抑制有害菌),增强肠屏障功能,调节免疫,部分菌株具有明确益生功效。
    • 检测意义: 评估肠道有益菌丰度,了解其在维持肠道稳态、缓解腹泻/便秘、改善乳糖不耐受等方面的潜在作用。
  2. 双歧杆菌(Bifidobacterium):

    • 作用: 婴幼儿肠道优势菌,成人亦重要。发酵复杂碳水化合物(如膳食纤维),产生乙酸、乳酸等,维护酸性环境,竞争性抑制病原体,促进免疫系统成熟,合成部分维生素。
    • 检测意义: 作为关键的共生益生菌,其丰度常被视为肠道健康(特别是婴幼儿)和“年轻化”菌群的重要标志。减少与多种肠道及肠外疾病相关。
  3. 肠球菌(Enterococcus):

    • 作用: 兼具共生与潜在致病性。正常存在于人畜肠道,参与发酵。部分菌株(如粪肠球菌、屎肠球菌)是重要的机会致病菌,易产生耐药性(如VRE),可引起尿路感染、菌血症、心内膜炎等。
    • 检测意义: 监测其在肠道中的数量至关重要。过高可能提示菌群失调或感染风险增加,尤其在免疫低下人群中。区分特定种(如粪肠球菌)及其耐药性对临床感染治疗尤为关键。

二、 核心检测方法

检测通常在粪便样本中进行,需规范采集、低温保存、及时送检。

  1. 传统培养法

    • 原理: 利用不同菌群的营养需求和生长特性,在选择性培养基上分离培养,通过菌落形态、显微镜观察和生化反应鉴定计数。
    • 乳杆菌: 常用MRS琼脂(需厌氧培养),通过菌落形态(小、光滑、白色)和镜下(革兰阳性杆菌,无芽孢)初筛,进一步生化鉴定(如发酵糖类)。
    • 双歧杆菌: 专用双歧杆菌选择性培养基(如BL琼脂、TPY琼脂等,需严格厌氧),菌落形态(圆形凸起、边缘光滑、白色或奶油色),镜下为多形态革兰阳性杆菌(分枝、棒状),需生化(如触酶阴性)或分子确认。
    • 肠球菌: 常用叠氮钠胆汁七叶苷琼脂(如KF链球菌琼脂或类似肠球菌选择性培养基),BFB阳性(黑色菌落),镜下革兰阳性球菌(成对或短链),进一步生化鉴定(如PYR阳性)。
    • 优点: 经典、直观、可获活菌用于后续实验(如药敏)。
    • 缺点: 耗时长(数天至一周),灵敏度低(部分细菌难培养或生长慢),操作繁琐,依赖经验,无法检测不可培养或休眠状态的细菌。
  2. 分子生物学方法(主流)

    • 原理: 提取样本总DNA,针对细菌种属特异的基因片段(如16S rRNA基因、特异性功能基因)进行扩增或杂交检测。
    • 实时荧光定量PCR(qPCR):
      • 关键: 设计高度特异性的引物和探针(靶向乳杆菌属/特定种、双歧杆菌属/特定种、肠球菌属/特定种如粪肠球菌/屎肠球菌)。
      • 过程: DNA提取,qPCR扩增并实时监测荧光信号强度。
      • 优点: 快速(数小时)、高灵敏度、高特异性、可精确定量(需标准曲线),可区分属/种,适合大规模样本筛查。
      • 缺点: 需精密仪器和专业操作;检测死菌DNA;绝对定量依赖标准品和准确DNA提取效率;多重检测需优化。
    • 16S rRNA基因高通量测序:
      • 过程: PCR扩增样本中细菌的16S rRNA基因(如V3-V4区),进行高通量测序,与数据库比对分析物种组成和相对丰度。
      • 优点: 无需培养,全面分析整个菌群结构(包括目标菌),可发现新物种或稀有物种。
      • 缺点: 成本较高;数据分析复杂;通常提供相对丰度(目标菌占所有细菌的比例)而非绝对数量(需结合qPCR或流式细胞术);分辨率到属或种水平(依赖于引物设计和数据库)。
    • 荧光原位杂交(FISH):
      • 过程: 用荧光标记的种属特异性寡核苷酸探针与样本中的细菌细胞杂交,在显微镜下观察计数。
      • 优点: 可直观观察目标菌在样本中的空间位置(原位检测),区分死/活菌(结合活菌染料)。
      • 缺点: 通量低,操作复杂,对样本固定和探针设计要求高,定量准确性不如qPCR。
  3. 代谢产物分析(间接推断)

    • 原理: 检测目标菌的特征性代谢物浓度(如气相/液相色谱-质谱联用)。
    • 乳杆菌/双歧杆菌: 乳酸(区分D/L型)、乙酸(双歧杆菌特征)。
    • 肠球菌: 酪胺等生物胺。
    • 优点: 反映细菌活性。
    • 缺点: 特异性不高(其他细菌也可能产生),只能间接推测丰度,需结合其他方法验证。

三、 检测流程关键点

  1. 样本采集与处理: 无菌容器收集新鲜粪便,尽快低温(如冰盒/4°C)保存运输(通常24小时内处理)。均质化(用缓冲液稀释)制备匀浆液。
  2. DNA提取(分子法): 使用优化的粪便DNA提取试剂盒,有效裂解细胞壁(特别是厚壁的革兰阳性菌),去除PCR抑制剂(如腐殖酸)。
  3. 方法选择与验证:
    • 目的决定方法: 快筛选qPCR;研究菌群结构选测序;需活菌或原位观察选培养或FISH。
    • 特异性验证: 新引物/探针需用已知菌株和近缘菌株验证特异性。
    • 定量准确性(qPCR): 标准曲线的构建(梯度稀释的标准品,如质粒DNA或已知浓度菌悬液基因组DNA),评估扩增效率和线性范围。
  4. 质量控制:
    • 阳性/阴性对照: 每次实验均需设置(已知目标菌DNA/无模板)。
    • 内参/过程控制: 监测DNA提取效率和是否存在抑制剂(如加入已知量的外源DNA或扩增通用细菌引物)。
    • 重复性: 技术重复评估操作误差。生物学重复(多个样本或同一样本不同部位)评估个体差异或样本异质性。
  5. 结果解读:
    • 培养法: 报告菌落形成单位(CFU/g 粪便湿重)。
    • qPCR: 报告绝对拷贝数(拷贝数/g 粪便湿重),需说明基于哪个基因(通常是16S rRNA基因或单拷贝基因,后者更准)。
    • 测序: 报告相对丰度(%)。重要提示: 相对丰度变化不能直接等同于绝对数量变化(例如,某种菌相对丰度下降,可能是它数量真减少了,也可能是其他菌数量激增导致其占比下降)。关键生理/病理指标解读需结合绝对定量。
    • 肠球菌特殊解读: 除数量外,特别关注是否检出高致病性或耐药性菌株(如VRE),通常需要进行种鉴定和药敏试验(需分离培养)。

四、 应用价值

  • 基础与临床研究: 阐明肠道菌群在健康维持、肥胖、糖尿病、炎症性肠病、肠易激综合征、过敏、肝病、自闭症、抗生素相关腹泻、感染等疾病发生发展中的作用。
  • 益生菌/益生元功效评价: 客观评估补充剂或食物对目标益生菌(如乳杆菌、双歧杆菌)数量的影响。
  • 疾病辅助诊断与风险评估: 特定菌群结构模式(如双歧杆菌/乳杆菌显著降低,肠球菌异常升高)可作为某些疾病(如艰难梭菌感染、结肠癌)的潜在生物标志物。
  • 个性化健康管理: 基于肠道菌群检测(包含核心菌群指标)提供饮食或生活方式干预建议。
  • 医院感染监测: 监测住院患者(尤其是重症、免疫抑制、长期抗生素使用者)肠道内肠球菌(特别是VRE)的定植情况,预防院内感染爆发。

五、 挑战与展望

  • 标准化: 不同实验室在样本处理、DNA提取、引物设计、数据库选择、生物信息流程等方面存在差异,影响结果可比性。亟需建立统一的操作规范和分析标准。
  • 死菌vs活菌: 分子方法(PCR,测序)无法区分死菌和活菌,可能高估具有代谢活性的菌群。结合培养、FISH、活性染料标记或RNA检测是方向。
  • 功能解析: 检测数量不等于了解功能。宏基因组、宏转录组、宏代谢组等多组学整合分析是揭示菌群功能的关键。
  • 个体化解读: “健康”肠道菌群的标准存在个体差异(年龄、地域、饮食、遗传)。建立基于大数据的个性化参考区间是未来方向。
  • 新技术应用: 数字PCR(绝对定量更精准)、单细胞测序、微流控芯片、生物传感器等新技术有望提升检测的灵敏度、通量和便捷性。

**总结而言,**乳杆菌、双歧杆菌和肠球菌作为肠道菌群的“晴雨表”,其精准检测是理解肠道微生态与健康/疾病关系的基础。随着分子技术的飞速发展和标准化工作的推进,检测手段将日益成熟,为科研探索、临床诊疗以及健康管理提供更强大、更可靠的支撑。