B6.129(Cg)-Gt(ROSA)26Sortm4(ACTB-tdTomato,-EGFP)Luo/J 小鼠

发布时间:2026-04-16 阅读量:10 作者:生物检测中心

B6.129(Cg)-Gt(ROSA)26Sor<tm4(ACTB-tdTomato,-EGFP)Luo>/J 小鼠:一种强大的双荧光遗传谱系追踪工具

品系全称解析:

  • B6.129(Cg): 表示该品系是在C57BL/6J (B6) 背景上,通过129来源的胚胎干细胞进行基因工程操作构建的。
  • Gt(ROSA)26Sor: 定位到小鼠基因组中著名的“ROSA26”位点。该位点位于13号染色体,以其开放性染色质结构和允许外源基因稳定、可预测表达的特点,成为基因打靶的理想位点。
  • tm4(ACTB-tdTomato,-EGFP)Luo: 表示这是在该位点插入的第4个靶向等位基因。其核心构建包含以下关键元件:
    • ACTB (β-actin) 启动子: 一个广泛表达的启动子,驱动报告基因在绝大多数细胞类型中组成性表达。
    • tdTomato: 一个明亮的红色荧光蛋白(报告基因)。
    • EGFP: 一个绿色荧光蛋白(报告基因)。
    • 这两个报告基因被设计成以“条件性切换”的方式工作。
  • Luo: 构建该小鼠品系的主要研究者或实验室的姓氏。
  • /J: 表明该品系由杰克逊实验室(Jackson Laboratory)保存和分发(此处仅用于标识来源,不视为企业名称)。
 

遗传构建与核心机制:

该品系携带一个精心设计的、位于ROSA26位点的基因打靶构建体。其核心是一个“双报告基因盒”,结构如下:

  1. 上游: 一个广泛表达的 β-actin (ACTB) 启动子
  2. 报告基因盒:
    • 启动子下游首先是一个 loxP-flanked (floxed)Stop 信号序列(通常包含多聚腺苷酸信号序列和/或转录终止子)。
    • Stop 序列之后是 tdTomato (红色荧光蛋白) 的编码序列。
    • tdTomato 编码序列之后是另一个 loxP 位点
    • 紧接着是 EGFP (绿色荧光蛋白) 的编码序列。
  3. 基础状态 (无 Cre 重组酶):
    • ACTB 启动子驱动转录。
    • 转录被 floxed Stop 信号序列阻断,无法到达下游的 tdTomato 和 EGFP。
    • 因此,所有细胞均不表达任何荧光蛋白(或仅有极低的本底表达,取决于具体构建)。
  4. Cre 介导的重组状态:
    • 当细胞表达 Cre 重组酶时,Cre 会识别两个 loxP 位点并介导它们之间的 DNA 发生重组。
    • 重组事件导致 floxed Stop 信号序列被切除
    • 重组后,ACTB 启动子现在能够直接驱动 EGFP 的表达。
    • 同时,tdTomato 的表达丢失(因为它被从连续的转录单位中移除)。
    • 因此,经历 Cre 重组的细胞及其所有后代细胞将稳定表达 EGFP (绿色)
    • 未经历 Cre 重组的细胞则不表达荧光蛋白或仅表达本底水平的 tdTomato (如果存在本底泄露)
 

关键特性与优势:

  1. Cre 依赖的荧光切换: 这是该品系的核心价值。荧光表达严格依赖于 Cre 重组酶的存在和活性,提供了时间(通过诱导型Cre)和空间(通过组织特异性Cre)上的精确控制。
  2. 双色对比: 重组细胞(绿色,EGFP+)与非重组细胞(无荧光或微弱红色)形成鲜明对比。这种对比使得在组织切片或活体成像中,清晰区分目标细胞群体(被Cre激活的)与背景细胞群体变得非常直观。
  3. 细胞谱系追踪: 这是该品系最强大的应用。一旦细胞在特定时间点(由Cre活性定义)经历重组并表达EGFP,该细胞及其所有增殖产生的子代细胞将永久性地标记为绿色。这使得研究者能够:
    • 追踪特定细胞类型在发育过程中的起源、迁移和分化命运。
    • 研究成体组织中干/祖细胞的增殖、分化和维持。
    • 探索损伤修复、再生或疾病(如癌症)过程中细胞的动态变化。
  4. 细胞边界可视化: 高表达膜定位EGFP(通常构建中包含膜定位信号)的细胞具有清晰的轮廓,便于在组织学分析中精确界定单个细胞的形态和位置。
  5. 背景清晰: 在优化的条件下,非重组细胞缺乏明显荧光信号,大大降低了背景干扰,提高了信噪比。
  6. 广泛适用性: 由于ROSA26位点的开放性和ACTB启动子的广泛表达特性,该报告基因在绝大多数细胞类型中都能有效工作,使其成为适用于多种器官系统研究的通用工具。
 

主要应用领域:

  1. 发育生物学: 追踪特定谱系在胚胎发育过程中的起源、迁移路径和最终分化命运。
  2. 干细胞生物学: 标记和追踪成体组织中干/祖细胞的自我更新、分化潜能和克隆动态。
  3. 神经科学: 研究神经元和胶质细胞的发育、神经回路形成、损伤反应和再生。
  4. 免疫学: 追踪免疫细胞(如T细胞、B细胞、巨噬细胞)的活化、增殖、迁移和组织归巢。
  5. 癌症生物学: 标记肿瘤起始细胞,研究肿瘤发生、进展、转移和肿瘤微环境中不同细胞成分的相互作用。
  6. 组织再生与修复: 探究损伤后参与修复过程的细胞来源及其贡献。
  7. 基因功能研究: 将Cre表达与其他遗传操作(如条件性基因敲除/敲入)相结合,在特定细胞群体中研究基因功能,并用荧光报告基因直观显示操作成功的细胞。
  8. 细胞移植研究: 追踪移植细胞的存活、定位和分化。
 

使用注意事项:

  1. Cre 品系选择: 实验结果的解读高度依赖于所使用的Cre品系的特异性(空间和时间)。需要仔细选择或验证Cre在目标细胞/组织中的表达模式。
  2. 重组效率: Cre介导的重组效率可能不是100%,导致目标群体中只有部分细胞被标记(绿色)。这需要在数据分析时考虑。
  3. 本底表达: 虽然设计上无Cre时无表达,但极少数情况下可能在特定组织或细胞类型中观察到微弱的tdTomato本底泄露。使用前建议进行本底检测。
  4. 荧光检测: 需要配备适当的荧光显微镜(共聚焦显微镜效果最佳)和滤光片组(检测tdTomato的红色通道和EGFP的绿色通道)。
  5. 遗传背景: 该品系通常在混合遗传背景上。根据实验需求,可能需要通过回交获得更纯净的C57BL/6J背景。
  6. 品系维护: 建议通过杂合子互交维持品系。纯合子小鼠通常可育且无显著异常,但需按规范进行繁殖管理。
 

总结:

B6.129-Gt(ROSA)26Sor<tm4(ACTB-tdTomato,-EGFP)Luo>/J 小鼠是一个功能强大且应用广泛的双荧光报告系统。其Cre依赖的、从无荧光(或微弱红)到绿色荧光的“开关”特性,为细胞谱系追踪、细胞命运图谱绘制以及特定细胞群体的可视化研究提供了无可比拟的清晰度和可靠性。通过与各种组织特异性或诱导型Cre品系相结合,该模型已成为现代遗传学研究,特别是在发育、干细胞和疾病机制探索中不可或缺的关键工具。研究者在使用时应充分理解其工作原理,精心设计实验,并注意相关的技术细节,以最大化其科学价值。