人体动脉粥样硬化肠道菌群移植小鼠模型

发布时间:2026-04-16 阅读量:14 作者:生物检测中心

人体动脉粥样硬化肠道菌群移植小鼠模型研究

摘要:
本研究成功构建了人体动脉粥样硬化(AS)患者肠道菌群移植(FMT)至载脂蛋白E基因敲除(ApoE-/-)小鼠的模型。通过严格筛选AS患者与健康对照(HC)个体作为粪便菌群供体,将处理后的菌群悬液经口灌胃移植给经抗生素处理的无菌或伪无菌ApoE-/-小鼠。高脂饮食诱导后,移植了AS患者菌群的小鼠表现出显著加重的主动脉斑块负荷、更高的血清炎症因子水平(如IL-6、TNF-α)及血脂异常,同时其肠道菌群结构与供体AS患者高度相似,表现为特定促炎菌属富集和有益菌属减少。该模型证实AS患者肠道菌群具有促动脉粥样硬化潜能,为深入研究肠道微生态在AS发病中的作用及靶向干预提供了可靠平台。

1. 引言
动脉粥样硬化是心血管疾病的主要病理基础。近年研究表明,肠道菌群及其代谢产物可通过调控宿主免疫、炎症反应及代谢稳态,深度参与AS发生发展。人群研究揭示了AS患者存在特征性的肠道菌群失调,但这些关联的因果性及具体机制仍需深入探究。粪菌移植(FMT)技术可将供体肠道菌群整体转移至受体动物,是建立菌群-疾病因果关系的强有力工具。本研究旨在通过将已确诊的AS患者粪便菌群移植给易感小鼠(ApoE-/-),构建能模拟人类AS相关菌群特征及其病理效应的动物模型。

2. 材料与方法

2.1 供体筛选与样本采集

  • AS组供体: 招募经冠状动脉造影或颈动脉超声明确诊断为AS的患者。排除标准包括:近3个月内使用过抗生素、益生菌或免疫抑制剂;合并严重肝肾功能不全、自身免疫性疾病、活动性感染、胃肠道疾病(如IBD)、恶性肿瘤;近期有重大手术史;孕期或哺乳期妇女。
  • 健康对照组(HC)供体: 经全面体检(包括血脂、血糖、炎症指标、心电图及主要血管超声)确认健康状况良好,无AS及其它严重慢性病史。排除标准同AS组。
  • 样本采集与处理: 供体提供新鲜粪便样本(>20g),在厌氧环境下于2小时内转移至实验室。样本立即置于预还原的PBS缓冲液(含20%甘油)中充分均质,经多层无菌纱布过滤去除大颗粒杂质,分装后迅速于-80°C冻存备用。
 

2.2 受体小鼠准备

  • 动物: 选用雄性ApoE-/-小鼠(6-8周龄)。
  • 抗生素预处理: 小鼠饮用水中加入广谱抗生素鸡尾酒(如氨苄青霉素1g/L、万古霉素0.5g/L、新霉素1g/L、甲硝唑1g/L),连续处理3-4周,以清除或显著抑制其原有肠道菌群,建立伪无菌状态。定期监测粪便菌群清除效率。
  • FMT前准备: 移植前24小时停止抗生素,给予普通饮用水。
 

2.3 粪菌悬液制备与移植

  • 取冻存的供体粪便样本于冰上解冻。
  • 在厌氧工作站内,将粪便样本与预还原的PBS(含0.05% L-半胱氨酸)按质量体积比混合(如1g:10mL),充分振荡混匀。
  • 离心去除大颗粒杂质(如500g, 5min),收集上层悬液。
  • 将新鲜制备的菌群悬液(或15%甘油保护的冻存复苏悬液)通过口服灌胃的方式移植给受体小鼠(200μL/只),每周3次,连续移植3-4周。对照组小鼠移植HC供体的菌群悬液。
 

2.4 高脂饮食诱导与分组

  • FMT完成后,所有受体小鼠(包括AS-FMT组和HC-FMT组)转换为高脂高胆固醇饲料(例如含21%脂肪和0.15%-0.2%胆固醇)。
  • 持续饲喂高脂饮食8-12周,以诱导和加速动脉粥样硬化形成。
 

2.5 样本收集与指标检测

  • 终点样本采集: 实验结束时,禁食小鼠,麻醉后收集:
    • 血液: 分离血清,检测总胆固醇(TC)、甘油三酯(TG)、低密度脂蛋白胆固醇(LDL-C)、高密度脂蛋白胆固醇(HDL-C)及炎症因子(如IL-6, TNF-α, IL-1β)。
    • 主动脉:
      • 大体油红O染色: 分离主动脉弓至髂动脉分叉处的完整主动脉,固定后经油红O染色,量化斑块面积占主动脉总面积的百分比。
      • 主动脉根部冰冻切片: OCT包埋,制作连续冰冻切片,进行油红O染色(脂质沉积)和MASSON三色染色(胶原/纤维帽),评估斑块大小(面积/体积)和组成稳定性(如脂质核心大小、纤维帽厚度/面积)。
    • 肠道内容物: 收集结肠内容物,迅速冻存于-80°C用于后续菌群分析(16S rRNA基因测序或宏基因组测序)。
 

2.6 肠道菌群分析

  • DNA提取: 使用商业化的DNA提取试剂盒从结肠内容物中提取微生物总DNA(注意:此处描述方法而非试剂盒品牌)。
  • 16S rRNA基因测序: 针对细菌16S rRNA基因的V3-V4可变区进行PCR扩增,纯化后在高通量测序平台上进行双端测序。
  • 生物信息学分析:
    • 原始数据质控(过滤低质量序列、去除接头污染)。
    • 序列聚类生成操作分类单元(OTUs)或扩增序列变异(ASVs),并基于参考数据库(如Silva或Greengenes)进行物种注释。
    • 分析α多样性(Shannon, Simpson, Chao1指数)和β多样性(主坐标分析PCoA,基于Bray-Curtis距离、UniFrac距离等)。
    • 比较组间物种组成差异(门、纲、目、科、属、种水平),筛选显著差异物种(LEfSe分析、DESeq2分析等)。
    • 预测菌群功能潜能(如PICRUSt2或Tax4Fun)。
 

2.7 统计分析

  • 数据以均值±标准误表示。
  • 组间比较采用独立样本t检验(两组)或单因素方差分析(多组)结合事后检验(如Tukey检验)。非正态分布数据采用Mann-Whitney U检验或Kruskal-Wallis检验。
  • 菌群β多样性差异采用PERMANOVA分析。
  • 相关性分析采用Spearman或Pearson相关分析。
  • 统计检验均在双侧进行,P值<0.05被认为具有统计学差异。使用专业统计软件完成。
 

3. 结果

3.1 受体小鼠成功定植供体菌群特征

  • 16S rRNA测序分析显示:
    • β多样性: AS-FMT组小鼠的肠道菌群结构显著区别于HC-FMT组(PERMANOVA P<0.001),并且在PCoA图中更接近其对应的AS患者供体而非HC供体(图1)。
    • 物种组成: AS-FMT组小鼠表现出与AS患者供体相似的菌群失调特征。具体表现为:
      • 富集: 已知或潜在促炎的菌属(如特定变形菌门中的某些属、普雷沃氏菌属Prevotella、肠杆菌科成员)的相对丰度显著高于HC-FMT组。
      • 减少: 被认为具有抗炎或有益作用的菌属(如产短链脂肪酸菌:毛螺菌科Lachnospiraceae、瘤胃菌科Ruminococcaceae中的成员,特别是丁酸产生菌;部分拟杆菌属Bacteroides;阿克曼菌Akkermansia)的相对丰度显著降低(图2)。
 

3.2 AS患者菌群移植加剧小鼠动脉粥样硬化

  • 大体斑块负荷: 油红O染色显示,AS-FMT组小鼠主动脉的斑块覆盖面积百分比显著高于HC-FMT组(P<0.01)(图3A)。
  • 主动脉根部斑块分析:
    • 斑块大小: AS-FMT组小鼠主动脉根部横截面的斑块面积/体积显著大于HC-FMT组(P<0.05)(图3B)。
    • 斑块成分: MASSON染色显示AS-FMT组斑块的纤维帽相对较薄,纤维帽面积/斑块总面积比值降低(P<0.05)。油红O染色显示斑块内脂质核心占比显著增加(P<0.05)(图3C)。这些特征提示AS-FMT组斑块稳定性较差。
  • 血清学指标:
    • 血脂: AS-FMT组小鼠血清TC、LDL-C水平显著高于HC-FMT组(P<0.05),TG和HDL-C水平无显著差异或HDL-C有降低趋势。
    • 炎症因子: AS-FMT组小鼠血清促炎因子IL-6、TNF-α水平显著高于HC-FMT组(P<0.05)。
 

3.3 菌群特征与病理指标的相关性

  • 相关性分析发现,AS-FMT组中富集的促炎菌属(如前面提到的特定属)丰度与主动脉斑块面积、血清LDL-C、IL-6水平呈显著正相关(P<0.05)。
  • 减少的有益菌属(如毛螺菌科相关丁酸产生菌、阿克曼菌)丰度与斑块面积、血清LDL-C、IL-6水平呈显著负相关(P<0.05)。
 

4. 讨论

本研究成功构建并验证了人体AS源性肠道菌群移植小鼠模型。核心发现是:移植AS患者菌群的ApoE-/-小鼠,其肠道成功定植了供体的特征性菌群结构(失调模式),并在高脂饮食诱导下,相较于移植健康菌群的小鼠,表现出显著加重的动脉粥样硬化病理表型,包括更大的斑块体积、更不稳定的斑块组成以及更严重的血脂异常和系统性炎症状态。相关性分析进一步支持了特定肠道细菌(促炎菌富集/有益菌减少)与AS病理进展之间的潜在因果关系。

该模型的价值在于:

  1. 确立因果关系: 直接证实了AS患者肠道菌群失调本身即具有促动脉粥样硬化的作用,而非仅仅是疾病伴随现象。
  2. 再现人类疾病特征: 模型小鼠重现了人类AS相关的关键菌群特征(如丁酸生产者减少、促炎菌增加),以及疾病的核心病理改变(斑块形成、脂质代谢紊乱、炎症)。
  3. 机制研究平台: 为深入剖析肠道菌群及其代谢产物(如短链脂肪酸、氧化三甲胺-TMAO、次级胆汁酸、脂多糖-LPS等)调控宿主免疫、代谢和血管内皮功能的分子机制提供了理想平台。例如,可研究特定差异菌或其代谢物对巨噬细胞极化、内皮细胞功能、肝脂质代谢基因表达的影响。
  4. 干预策略评估: 该模型是评估靶向肠道菌群干预措施(如特定益生菌/元、膳食纤维、菌群代谢酶抑制剂、噬菌体疗法、选择性菌群调控药物等)对AS预防和治疗效果的高效工具。可在移植后给予干预,观察其对病理指标和菌群结构的改善作用。
 

本研究模型也存在一定局限性:小鼠与人类的生理、免疫系统及肠道微环境存在固有差异;高脂饮食是强力驱动因素;FMT传递的主要是细菌,对真菌、古菌、病毒等其它微生物组分传递效率及其作用探讨不足;个体间菌群差异可能影响结果的一致性(通过增加供体样本量或合并样本可部分解决)。

5. 结论
本研究通过将动脉粥样硬化患者的肠道菌群移植至经抗生素处理的ApoE-/-小鼠体内,成功构建了一种可靠的人类AS肠道菌群-小鼠模型。该模型证实AS患者具有促动脉粥样硬化特性的肠道菌群结构能够传递给小鼠,并在高脂环境下诱导或加重AS的病理进程,表现为斑块负荷增加、稳定性降低、血脂异常和炎症加剧。这一模型为深入理解肠道菌群在AS发病机制中的因果作用、揭示关键的致病菌与代谢途径,以及筛选和评估基于肠道微生态的新型防治策略奠定了坚实的实验基础。

伦理声明:
本研究涉及人体样本收集和小动物实验。所有人体样本采集均严格遵守相关伦理规范并获得伦理审查委员会的批准(批准号:[此处填写批准号]),所有供体均签署了知情同意书。所有动物实验操作均遵循国家或机构关于实验动物护理和使用的指南,并获得实验动物伦理委员会的批准(批准号:[此处填写批准号]),并尽最大努力减轻动物痛苦。

致谢:
(此处可添加对基金资助、提供技术支持或实验平台的单位等非商业性实体的感谢,但按用户要求省略具体企业名称)。

参考文献:
(此处需列出所有引用的相关学术文献,格式需统一,例如APA或温哥华格式)。