蛋白分子量测定:方法与原理详解
蛋白质分子量测定是生物化学、分子生物学及蛋白质组学研究中的基础环节,其结果对理解蛋白质结构、功能、相互作用以及后续的纯化鉴定至关重要。目前,科学家们主要依赖以下几种技术进行精确测定:
一、十二烷基硫酸钠聚丙烯酰胺凝胶电泳 (SDS-PAGE)
- 原理: 蛋白质样品在含有阴离子去污剂SDS和还原剂的缓冲液中加热变性。SDS使蛋白质带大量负电荷,掩盖其原有电荷差异;还原剂断裂二硫键,使蛋白质解聚成单条肽链。随后在聚丙烯酰胺凝胶电场中迁移,迁移速率主要取决于分子量大小。
- 优点:
- 操作简便,成本低,设备普及。
- 可同时分析多个样品。
- 能直观显示蛋白质纯度和大致分子量。
- 缺点:
- 精确度有限(相对误差约5-10%)。
- 不能区分分子量非常接近的蛋白质。
- 无法测定天然状态下的分子量(因变性)。
- 需要分子量标准品(Marker)。
- 应用: 最常用的初步筛选和估算方法,尤其在实验室日常分析中。
二、凝胶过滤色谱/尺寸排阻色谱 (GFC/SEC)
- 原理: 蛋白质溶液流经填充满多孔凝胶颗粒的色谱柱。不同大小的蛋白质分子在流经过程中,小分子能进入更多孔洞,路径长,保留时间长;大分子被排阻在孔外,路径短,保留时间短。分子量通过与已知分子量标准品洗脱体积的比较确定。
- 优点:
- 可在接近生理条件下(非变性)测定蛋白质的流体力学体积(斯托克斯半径),适用于研究天然状态蛋白质及寡聚体。
- 可同时进行纯化和分子量测定。
- 精确度优于SDS-PAGE(相对误差约5%)。
- 缺点:
- 需要标准品建立校准曲线。
- 分子形状(球形/棒状)影响结果,非球形蛋白结果可能偏离真实分子量。
- 色谱柱成本较高,耗时较长。
- 应用: 研究蛋白质在溶液中的天然构象、寡聚状态、蛋白质-蛋白质相互作用。
三、质谱法 (Mass Spectrometry, MS)
质谱法是目前测定蛋白质分子量最精确、最强大的技术,尤其适用于复杂样品和高通量分析。主要分为两类:
-
基质辅助激光解吸电离飞行时间质谱 (MALDI-TOF MS):
- 原理: 蛋白质样品与吸光基质混合并干燥成结晶。激光脉冲照射使基质吸收能量并汽化,同时将包裹的蛋白质分子软电离成带单电荷或多电荷的气相离子。离子在电场中加速,根据质荷比(m/z)不同,在无场飞行管中的飞行时间不同,小分子飞行时间短,大分子飞行时间长。通过检测飞行时间换算分子量。
- 优点:
- 测定范围广(可达数百万道尔顿)。
- 灵敏度高,样品量少。
- 耐受一定量的盐和缓冲液。
- 谱图相对简单(主要产生单电荷或低电荷峰),易于解析。
- 缺点:
- 精确度受基质结晶均一性影响。
- 分辨率通常低于ESI-MS。
-
电喷雾电离质谱 (Electrospray Ionization Mass Spectrometry, ESI-MS):
- 原理: 蛋白质溶液在高电压下通过毛细管喷出形成带电液滴,溶剂蒸发使液滴收缩,库仑排斥力导致液滴裂解,最终产生带多电荷的气相蛋白质离子。这些离子进入质量分析器(常与TOF、四极杆、离子阱、Orbitrap联用),按质荷比(m/z)分离检测。通过计算同一分子不同电荷态的多个峰,反推出精确分子量。
- 优点:
- 精确度极高(误差通常小于0.01%),分辨率高。
- 可与液相色谱联用(LC-ESI-MS),直接分析复杂混合物。
- 可提供多电荷信息,有助于分析大分子。
- 可在较温和条件下电离,适用于研究弱相互作用复合物(非共价复合物质谱)。
- 缺点:
- 对样品纯度要求较高,易受盐和去污剂抑制。
- 谱图复杂(多电荷峰簇),需要解卷积软件处理。
- 仪器成本高,操作相对复杂。
- 质谱应用:
- 精确测定完整蛋白质分子量(包括翻译后修饰导致的微小质量变化)。
- 鉴定蛋白质(通过肽质量指纹图或串联质谱测序)。
- 分析蛋白质复合物(非共价相互作用)。
- 蛋白质组学大规模鉴定和定量。
四、其他方法
- 沉降平衡超速离心: 经典方法,在严格热力学平衡状态下测定分子量,结果非常准确,是研究溶液中蛋白质均一性、缔合状态的金标准之一。但耗时极长,操作复杂,已较少用于常规分子量测定。
- 小角X射线散射 (SAXS): 可提供溶液中蛋白质的整体形状和分子量信息,但需要同步辐射光源或高强度实验室光源,数据分析复杂。
- 静态光散射 (SLS) + SEC (SEC-MALS): 将尺寸排阻色谱与多角度激光光散射检测器联用。SEC分离组分后,SLS直接测定溶液中蛋白质的绝对分子量(无需标准曲线)和旋转半径。克服了SEC单独使用需标准品的缺点和形状影响,是测定溶液中天然蛋白质分子量和构象的有力工具。
选择测定方法的考虑因素
- 所需精确度: 高精度首选质谱(尤其ESI-MS)或SEC-MALS。
- 样品状态: 变性状态用SDS-PAGE;天然状态用SEC、SEC-MALS、沉降平衡、非变性质谱。
- 样品复杂度: 简单样品各种方法均可;复杂混合物首选LC-ESI-MS或SDS-PAGE(需切胶分析)。
- 研究目的: 仅需估算用SDS-PAGE;研究修饰用质谱;研究寡聚态用SEC、SEC-MALS、沉降平衡、非变性质谱。
- 成本与设备: SDS-PAGE最经济简便;质谱和SEC-MALS设备昂贵。
关键注意事项
- 样品纯度: 杂质会严重影响所有方法的准确性,尤其是质谱和色谱法。测定前需充分纯化。
- 样品缓冲液: 高盐、去污剂、甘油等会干扰电泳、色谱和质谱分析。测定前需置换到兼容的缓冲液中(如质谱常用挥发性缓冲液甲酸铵、醋酸铵)。
- 分子量标准品: SDS-PAGE和SEC必须使用准确可靠的分子量标准品进行校准。
- 蛋白质特性: 糖基化、磷酸化等翻译后修饰会增加实际分子量;二硫键影响SDS-PAGE结果(需还原处理);极端氨基酸组成(如富含脯氨酸)或特殊结构域可能影响迁移行为。
- 结果解读: SDS-PAGE、SEC给出的是相对分子量或表观分子量;质谱(尤其ESI-MS)和SEC-MALS给出的是绝对分子量。理解方法原理和局限性对正确解读结果至关重要。
总结
蛋白分子量测定技术各具特色。SDS-PAGE凭借其简便、直观、高通量和低成本,仍是实验室日常估算的基石。凝胶过滤色谱在非变性和寡聚体研究中不可或缺。质谱技术,尤其是ESI-MS和MALDI-TOF MS,凭借其超高精度、高灵敏度和强大的分析能力,已成为精确测定分子量(包括修饰)和蛋白质鉴定的核心工具。联用技术如SEC-MALS则提供了在溶液中测定绝对分子量和构象信息的强大手段。研究者应根据具体实验目的、样品性质和对精度的要求,选择最合适的方法或方法组合。
参考文献
- Laemmli, U.K. (1970) Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. Nature, 227, 680-685. (SDS-PAGE经典论文)
- Porath, J. (1963) Some recently developed fractionation procedures and their application to peptide and protein hormones. Pure Appl. Chem., 6, 233-244. (凝胶过滤原理)
- Karas, M., Hillenkamp, F. (1988) Laser desorption ionization of proteins with molecular masses exceeding 10,000 daltons. Anal. Chem., 60, 2299-2301. (MALDI-TOF MS里程碑论文)
- Fenn, J.B., et al. (1989) Electrospray ionization for mass spectrometry of large biomolecules. Science, 246, 64-71. (ESI-MS里程碑论文, 获诺贝尔奖)
- Wyatt, P.J. (1993) Light scattering and the absolute characterization of macromolecules. Anal. Chim. Acta, 272, 1-40. (光散射原理与应用)
- Cole, J.L., Lary, J.W., Moody, T.P., Laue, T.M. (2008) Analytical ultracentrifugation: sedimentation velocity and sedimentation equilibrium. Methods Cell Biol., 84, 143-179. (超速离心综述)