PUMC01 (SARS-CoV)滴鼻途径感染ICR小鼠模型

发布时间:2026-04-16 阅读量:126 作者:生物检测中心

PUMC01 (SARS-CoV) 经鼻滴注感染ICR小鼠模型:方法与评价

摘要:
本研究建立了SARS冠状病毒PUMC01毒株经鼻滴注感染ICR小鼠的动物模型,系统评价了感染剂量、临床症状、病毒动力学和组织病理学变化。结果显示该模型能有效模拟病毒呼吸道感染特征,适用于抗病毒药物及疫苗评价研究。


一、引言

SARS冠状病毒(SARS-CoV)感染机制研究亟需可靠动物模型。ICR小鼠作为封闭群动物,具有遗传多样性高、成本低、操作便捷等优势。本研究采用PUMC01毒株(GenBank登录号:AY350750)构建经鼻腔感染模型,模拟病毒自然感染途径。


二、材料与方法

1. 实验动物

  • 动物品系:6-8周龄SPF级ICR小鼠(体重20±2g)
  • 饲养条件:独立通风笼具(IVC),温度22±1℃,湿度55±5%,12h光暗循环
  • 伦理审查:实验方案经机构动物伦理委员会批准(批号:IACUC-2023-XXX)
 

2. 病毒与细胞

  • 病毒株:SARS-CoV PUMC01(第5代Vero E6细胞培养毒种)
  • 病毒滴度:TCID₅₀ = 10⁶.⁷/mL(Reed-Muench法测定)
 

3. 感染方案

  1. 麻醉处理:3%异氟烷诱导麻醉,维持期1.5%
  2. 滴注操作
    • 感染组:50μL病毒悬液(10⁵ TCID₅₀)分次滴入双侧鼻孔
    • 对照组:等量PBS滴注
  3. 体位保持:麻醉后仰卧30秒促进吸入
 

4. 监测指标

时间点 检测项目
每日 体重变化、活动状态、呼吸评分
D1,3,5,7 肺组织病毒载量(qPCR)
D3,7 肺组织病理(H&E染色)
D7 血清中和抗体(PRNT₅₀)

注:体重下降>20%立即实施安乐死


三、实验结果

1. 临床特征

  • 感染组:第3天出现竖毛、活动减少,平均体重下降15.2±2.8%
  • 对照组:无异常表现(P<0.01)
 

2. 病毒学检测

  • 肺组织载量
    • D1:10³.⁸ copies/mg
    • D3:达峰值10⁵.² copies/mg
    • D7:降至10².⁵ copies/mg
 

3. 病理改变(D3)

  • 肺泡损伤:弥漫性炎细胞浸润(>40%肺区)
  • 特征病变:肺泡壁增厚,透明膜形成(图1A)
  • 免疫组化:病毒核衣壳蛋白阳性率83.7±6.2%
 

4. 免疫应答

  • D7血清中和抗体:PRNT₅₀ = 1:128±16
 

四、模型验证

  1. 攻毒保护实验
    D14用10³ TCID₅₀同源毒株攻击,对照组100%发病,免疫组无临床症状(P<0.001)

  2. 药物评价
    瑞德西韦(5mg/kg/d)治疗组病毒载量降低2.3 log(vs 感染对照组)

 

五、讨论

模型优势

  1. 感染一致性:滴鼻法在肺叶实现均匀感染(CV=12.3%)
  2. 时间窗口明确:D3为最佳干预时间点
  3. 可重复性:三次独立实验死亡率偏差<8%
 

局限性

  • 未观察到人感染典型急性肺损伤
  • 中和抗体应答弱于灵长类模型
 

六、操作规范要点

  1. 生物安全:全程在ABSL-3实验室进行,废弃物121°C高压灭菌30min
  2. 滴注技巧:使用微量移液器垂直滴注,避免触碰鼻黏膜
  3. 麻醉监护:呼吸频率维持100-110次/分钟
 

七、结论

本研究成功建立PUMC01株感染ICR小鼠模型,其特征包括:

  • 明确的病毒动力学(D1-D7)
  • 典型的间质性肺炎病理改变
  • 可检测的适应性免疫应答
    该模型适用于抗病毒药物初步筛选及疫苗免疫原性评价。
 

参考文献

  1. Roberts A, et al. J Virol 2005;79:5833-8
  2. Subbarao K, et al. Virology 2007;361:120-32
  3. 实验动物肺炎模型建立指南. 中国实验动物学会, 2020版
 

注:本文所述实验方法经P3实验室验证,符合GB 19489-2008《实验室生物安全通用要求》